A panel of genotypically and phenotypically diverse clinical Acinetobacter baumannii strains for novel antibiotic development

适用于新型抗生素研发的基因型与表型多样化临床鲍曼不动杆菌菌株库

来源:Microbiology Spectrum, Volume 12, Issue 8, August 2024, doi:10.1128/spectrum.00086-24

《微生物学图谱》,第12卷第8期,2024年8月

 

摘要

鲍曼不动杆菌是全球重点致病菌,其固有和获得性耐药问题突出,新型抗菌药物研发进展缓慢,给临床抗感染治疗带来巨大压力。目前该领域研究多依赖ATCC 17978、ATCC 19606、AB5075等模式菌株,这类菌株遗传与表型多样性有限,无法真实反映临床菌株特征。本研究从全国27个省份64家医院收集的2197株临床鲍曼不动杆菌中,筛选出45株基因型和表型具有高度异质性的菌株,构建标准化菌株库,并开展多项表型与基因型对比分析。结果显示,序列型ST2菌株耐药率更高、环境适应的适合度代价更低,但生物膜形成能力较弱;大菌落E型(MTE)菌株生物膜产量更高,其耐药特征与生长速率无明显关联。该菌株库填补了现有标准菌株资源的短板,揭示了鲍曼不动杆菌耐药、适合度、生物膜形成三者间的复杂关联,可为新型抗菌药物研发、临床诊疗及相关基础研究提供标准化参考资源。

 

关键词

鲍曼不动杆菌;临床菌株库;基因型;表型;抗生素耐药;生物膜;毒力;基因组分析

 

研究目的

构建一套兼具基因型、表型多样性的临床鲍曼不动杆菌标准化菌株库;系统分析不同序列型、菌落表型菌株的耐药谱、生长能力、生物膜形成及毒力差异;解析ST2、MTE等优势菌株的生物学特征;明确耐药基因、移动遗传元件的分布规律;为新型抗生素、抗菌疗法研发以及鲍曼不动杆菌相关基础研究提供可靠的实验材料与数据支撑。

 

研究思路

首先从国内多地区临床分离株中,基于多位点序列分型结果筛选45株代表性菌株,组建多样化菌株库;其次利用全基因组测序、生物信息学分析,解析菌株的序列型、荚膜型、脂寡糖分型、耐药基因、质粒及移动遗传元件分布,并构建系统发育树;然后采用肉汤微量稀释法测定10种常用抗生素的最低抑菌浓度,评估整体耐药特征;接着开展菌落形态观察、生物膜形成实验、蜡螟幼虫毒力实验,同时使用芬兰Bioscreen仪器测定菌株生长速率;最后分组对比ST2与非ST2、MTE与非MTE菌株的各项指标,统计分析数据并总结菌株特征与生物学关联。

 

研究亮点

1. 基于数千株临床分离株筛选得到45株高异质性鲍曼不动杆菌,构建了覆盖多种分型、耐药类型的标准化菌株库,弥补传统模式菌株多样性不足的缺陷。

2. 全面完成菌株基因组解析,系统阐明各类耐药基因、转座子、质粒的分布与遗传环境,明确碳青霉烯类耐药主要由blaOXA-23基因介导。

3. 证实临床优势ST2菌株兼具高耐药性与低适合度代价,解释其在院内广泛流行的原因,同时发现该菌株生物膜形成能力偏弱。

4. 发现MTE菌落表型菌株生物膜生成能力更强,且仅对依拉环素的耐药率存在组间差异,其余抗生素耐药特征无明显区别。

5. 验证荚膜分型与菌株毒力无绝对对应关系,说明鲍曼不动杆菌毒力由多因素共同调控。

6. 菌株库同时公开菌株资源与组学数据,可面向全球科研人员共享,便于学术交流与新药筛选工作开展。

 

可延伸的方向

1. 利用该多样化菌株库开展噬菌体、抗菌肽、新型抗菌化合物的体外药效筛选与评价。

2. 深入探究blaOXA系列耐药基因、转座子、质粒的水平传播机制,追踪耐药基因扩散路径。

3. 分析生物膜形成、耐药性、菌株适合度三者的互作分子机制。

4. 针对ST2优势流行菌株开展靶向抑菌、减毒策略研究。

5. 结合该菌株库开展疫苗候选靶点筛选与有效性验证。

6. 探究不同培养条件、外界胁迫对菌株生长、生物膜及耐药表型的影响。

7. 持续扩充菌株库,纳入全耐药菌株、不同地域流行克隆,进一步丰富资源。

 

测量的数据及研究意义

1 开展全基因组测序与进化分析,解析菌株序列型、荚膜型、脂寡糖分型、质粒及耐药基因分布,数据来自图1、图2。研究意义:明确45株菌株遗传多样性,确认其涵盖全球主流流行克隆及新型分型,掌握耐药基因与移动元件的分布特征,从基因型层面阐明菌株异质性。

 

 

2 测定10种临床常用抗生素的最低抑菌浓度,统计各组菌株耐药率,数据来自图3、表2、表3。研究意义:掌握菌株整体耐药谱,证实ST2菌株对多数抗生素耐药率显著更高,MTE菌株仅依拉环素耐药存在组间差异,明确不同分型菌株的耐药特征。

 

 

 

3 分析碳青霉烯耐药基因的拷贝数、定位及遗传背景,数据来自表1、图4至图7。研究意义:阐明blaOXA-23等核心耐药基因的传播载体与分布规律,揭示不同质粒、转座子在耐药基因水平转移中的作用。

 

 

 

 

 

4 检测菌株生物膜形成能力,数据来自图8。研究意义:发现ST2菌株生物膜形成能力弱于非ST2菌株,MTE菌株生物膜产量更高,明确菌落形态、序列型与生物膜表型的关联。

 

5  使用仪器测定菌株生长速率,数据来自图9。研究意义:证明ST2菌株生长速率更优、适合度代价低,解释其院内流行的生理学基础。

 

6  利用蜡螟模型评估不同荚膜型菌株的毒力,数据来自图10。研究意义:证实相同荚膜型菌株毒力也存在明显差异,说明荚膜分型不能作为判定毒力的单一标准。

 

 

结论

1  本研究构建的45株临床鲍曼不动杆菌菌株具有高度基因型与表型多样性,涵盖全球主流流行克隆、多种耐药基因型与菌落表型,可作为标准化实验材料用于新药研发与基础研究。

2  ST2是优势流行序列型,该菌株对多种抗生素耐药率高,生长适合度代价低,但生物膜形成能力较弱,是院内感染高发的重要原因。

3  MTE菌落表型菌株生物膜形成能力更强,仅在依拉环素耐药率上与非MTE菌株存在差异,其余抗菌药物耐药特征无显著区别。

4  菌株碳青霉烯耐药主要由blaOXA-23基因介导,该基因多由转座子或质粒携带,可在菌株间水平传播,是耐药扩散的关键因素。

5  鲍曼不动杆菌荚膜分型与菌株毒力无直接对应关系,毒力是多基因共同调控的复杂性状。

6  传统模式菌株无法代表临床鲍曼不动杆菌的真实特征,该菌株库可有效弥补现有实验资源的不足,同时菌株传代次数需严格管控,避免基因型与表型发生改变。

 

使用芬兰 Bioscreen仪器测量数据的研究意义

本研究采用芬兰Bioscreen C仪器连续监测菌株OD值,测定生长速率、绘制生长曲线。第一,仪器可实现高通量、自动化长时间检测,统一培养环境,最大程度降低人工操作误差,精准量化不同菌株的生长速率。第二,可同时对多批次、多组别菌株开展平行检测,保证实验重复性,可靠对比ST2与非ST2、不同菌落表型菌株的生长差异。第三,完整记录菌株全生长周期动态,区分对数期、稳定期生长特征,直观反映菌株适合度高低,为解释ST2菌株流行优势提供量化数据。第四,将生长表型与耐药、生物膜表型进行关联分析,厘清菌株生长能力和其他生物学特征的内在联系。第五,该设备的检测流程标准化,适用于大批量临床菌株的生长表型筛选,也为同类病原微生物表型研究提供参考方法。