细菌在生长繁殖过程中，可通过测定细菌的生长量，来了解细菌的各种生理生化状态。目前，细菌生长量的测定主要有４类方法：细胞数目的测量（直接显微计数法、平板活菌技术、载片培养技术、微孔过滤法、库尔特计数器、流动细胞光度法、表荧光滤过技术、荧光抗体技术、微型ＥＬＩＳＡ、电子显微镜）；细胞量的测量（干重法、比浊法、离心压缩细胞体积法）；细菌浓度的间接测量（通过测定核酸、蛋白质、多糖、脂质、ＡＴＰ等含量来估算菌浓度，或通过测量Ｃ、Ｎ、Ｏ和Ｐ等元素的含量间接计算菌浓度）；生物量在线检测（微热量计法、荧光法、电容／电导／阻抗法等）［１］。其中比浊法检测成本低、快速，而在线检测技术准确，可实时分析细菌生长过程中的生长量，因此具有较好的应用前景。该文以早期分离筛选的泰乐菌素降解菌——无丙二酸柠檬酸杆菌（Ｃｉｔｒｏｂａｃｔｅｒａｍａｌｏｎａｔｉｃｕｓ）为材料［２］，比较了活菌稀释计数法、比浊法和电导率法绘制该菌生长曲线的差异，为研究该菌的形态学特征、适应性及泰乐菌素降解机理提供其生长量参数。
生长曲线的测定取４８ｈ培养后的泰乐菌素降解菌种子液，将种子液按１０％的接种量培养，分别在８～７２ｈ中，间隔８ｈ取样。用活菌计数法测量培养基中细菌浓度，同时以１２１℃，灭菌２０ｍｉｎ的ＹＰＤ培养基为对照，采用比浊法测定菌液浓度，重复３次，计算平均值；分别在８～７２ｈ间，每间隔４ｈ取菌液１ｍＬ，加入装有３０ｍＬ去离子水的试管中，同上条件超声处理，取细胞破碎后的菌液５．０ｍＬ，用ＤＤ－１２Ａ型电导率仪测定电导率值，每个样品测定３次，计算平均值。绘制泰乐菌素降解菌培养时间与Ｉｎ（ｃｆｕ／ｍＬ）以及ＯＤ５００ｎｍ和电导率值的生长曲线。
泰乐菌素降解菌的生长曲线
分别采用活菌稀释计数法、电导率法和比浊法对泰乐菌素降解菌的生长曲线进行测定，结果如图１，图２所示。活菌稀释计数法测定的降解菌生长曲线符合细菌生长的各个阶段：０～８ｈ为降解菌生长的延迟期，８～２４ｈ为对数生长期，２４～５６ｈ为稳定期，５６～７２ｈ为衰亡期。电导率法测定的生长曲线也有明显的延迟期、对数生长期和稳定期，且延迟期和对数生长期的时间范围和活菌稀释计数法相似，但此法所测到的稳定期为２４～７２ｈ，无衰亡期。而分光光度法的生长曲线始终保持上升状态，无明显的延迟期、对数生长期、稳定期和衰亡期。
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